細(xì)胞培養(yǎng)基純化實(shí)驗(yàn)和包被液的操作過(guò)程

　純化實(shí)驗(yàn)操作步驟：

    ．去除培養(yǎng)液；

　　2．×無(wú)鈣鎂PBS洗滌；

　　3．加入×EDTA(0×EDTA用PBS稀釋。)37℃孵育5分鐘。

　　4．加入ES培養(yǎng)基使失活；

　　5．將細(xì)胞轉(zhuǎn)入5ml離心管中離心3min；

　　6．去除上清，將細(xì)胞重懸于2mlES培養(yǎng)基，至少吹打0－20次。

　　如果加入培養(yǎng)基的量較少會(huì)比較容易將細(xì)胞團(tuán)弄散分開(kāi)。ES細(xì)胞有聚集成團(tuán)的傾向，傳代過(guò)程中仔細(xì)將細(xì)胞弄散分開(kāi)很重要。這樣可能會(huì)減少細(xì)胞的自然分化。

　　7．將細(xì)胞接種在沒(méi)有包被的組織培養(yǎng)皿中（使用和一開(kāi)始同樣規(guī)格的培養(yǎng)皿）放入溫箱2小時(shí)（分化細(xì)胞在該時(shí)間內(nèi)將黏附，而ES細(xì)胞仍將保持懸浮）；

　　8．將含有細(xì)胞的培養(yǎng)基轉(zhuǎn)入明膠包被的組織培養(yǎng)皿。吹打以確保細(xì)胞被分散開(kāi)。

　　9．建議按：4－：0的比率傳代(ATCC)

　　保持細(xì)胞的傳代比率很重要，以我們的經(jīng)驗(yàn)，：8的比率是好的，可以使細(xì)胞的自然分化降到zui低。當(dāng)你使用不同規(guī)格的培養(yǎng)板進(jìn)行細(xì)胞傳代可以使用表來(lái)計(jì)算傳代比率。

包被液的準(zhǔn)備：

　　多聚-L-，5μg/ml

　　把75ml多聚-L-和425ml ×PBS混合。貯存在4℃。

　　纖維結(jié)合蛋白，μg/ml

　　把0.5ml纖維結(jié)合蛋白和500ml ×PBS混合。

　　包被過(guò)程：

　?。尤攵嗑?L-，至少2－3小時(shí)（過(guò)夜也行）

　　2．吸出多聚-L-

　　3．加入纖維結(jié)合蛋白，大約－2小時(shí)

　　4．吸出纖維結(jié)合蛋白，放置30分鐘晾干

　　5．貯存在4℃

　　24孔板用200μl，6孔板用500μl。震蕩培養(yǎng)板確保溶液能夠覆蓋蓋玻片或培養(yǎng)基孔。有時(shí)需要?jiǎng)×艺鹗幣囵B(yǎng)板。